Правила взятия крови на стерильность

ВЕНОЗНАЯ КРОВЬ НА СТЕРИЛЬНОСТЬ

I. Контейнер для сбора биоматериала:

• Аэробный флакон для гемокультивирования (зелёная крышка)
• Анаэробный флакон для гемокультивирования (оранжевая или синяя крышка)
• Аэробный педиатрический флакон для гемокультивирования (жёлтая или красная крышка)

II. Хранение/транспортировка:

• +20...+25 не более 24ч. с момента взятия биоматериала

III. Последовательность взятия биоматериала для культурального исследования (взрослые):

1. Снимите пластиковый колпачок и утилизируйте;
2. Во избежание контаминации перед проколом резиновой крышки флакона обработайте её надлежащим дезинфицирующим средством (например, раствор хлоргексидина в 70% изопропиловом спирте, 70% изопропиловый спирт или йодный раствор, или принятое в вашем учереждении);
3. Обработайте кожу пациента в месте венепункции, после обработки не пальпируйте вену повторно;
4. Если для взятия крови используется шприц, то в первую очередь инокулируется флакон с оранжевой/синей крышкой (анаэробный) - не более 10мл, затем с зелёной крышкой (аэробный) - не более 10мл;
5. Если вы используете комплект для взятия крови, то сначала инокулируется флакон с зелёной крышкой (аэробный) - не более 10мл, затем флакон с оранжевой/синей крышкой (анаэробный) - не более 10 мл;
6. Промаркируйте флаконы, подписав на этикетке ФИО пациента и дату, время забора крови;
7. Упакуйте флаконы в зип-лок, на зип-лок приклейте штрих-код.

IV. Последовательность взятия биоматериала для культурального исследования (дети):

1. Снимите пластиковый колпачок и утилизируйте;
2. Во избежание контаминации перед проколом резиновой крышки флакона обработайте её надлежащим дезинфицирующим средством (например, раствор хлоргексидина в 70% изопропиловом спирте, 70% изопропиловый спирт или йодный раствор, или принятое в вашем учереждении);
3. Обработайте кожу пациента в месте венепункции, после обработки не пальпируйте вену повторно;
4. Инокулируйте аэробный педиатрический флакон - до 4 мл. В случае невозможности взятия такого объёма, допускается меньший объём - от 0,1 мл для новорожденных детей;
5. Для детей весом более 12,8 кг при возможности взятия большего объёма возможно применение флаконов для взрослых. Число флаконов определяется возможностями взятия крови;
6. Промаркируйте флакон, подписав на этикетке ФИО пациента и дату, время забора крови;
7. Промаркируйте флакон штрих-кодом и упакуйте в зип-лок.

ИССЛЕДОВАНИЕ ИНФЕКЦИЙ, СВЯЗАННЫХ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ СОСУДИСТЫХ КАТЕТЕРОВ

Основополагающим в диагностике КАИК является документирование бактериемии. Имеется 2 пути диагностики КАИК:

1. Алгоритм без удаления катетера: исследуется кровь, полученная из катетера, и одновременно кровь, полученная из интактной периферической вены (одномоментно, время взятия фиксируется с точностью до минуты); 
2. Алгоритм с удалением катетера: исследуется катетер (дистальный участок катетера, длиной 2-3 см помещается в пробирку с транспортной средой Amies или в стерильный контейнер с красной крышкой) и кровь, полученная при венепункции интактной периферической вены, взятая во флакон для гемокультивирования.

V. Примечания:

• Кровь на стерильность всегда берут первой (перед другими видами анализов);
• Выполняется не менее двух заборов проб крови, взятых из вен разных верхних конечностей, с интервалом 30 минут;
• Взятие крови у пациента выполняется как можно скорее после появления клинических симптомов (лихорадки и озноба), на подъеме температуры (не на пике лихорадки);
• Образцы крови на посев должны быть взяты до ОЧЕРЕДНОГО введения антибиотиков;
• Флаконы не допускается охлаждать или ставить в термостат. До доставки в лабораторию флаконы должны храниться при комнатной температуре, избегая попадания солнечных лучей;
• Взятие крови не рекомендуется из катетера. Исключение - подозрение на катетер-ассоциированную инфекцию (в этом случае кровь берут из интактной периферической вены и через подозрительный катетер);
• Для исследования на Neisseria Meningitidis забор крови производится только в аэробный флакон.